Hongos nematófagos del género Arthrobotrys spp., en el control de Meloidogyne incognita bajo condiciones in vitro
DOI:
https://doi.org/10.59741/agraria.v14i1.529Palabras clave:
Nematodos fitopatógenos, control biológico, OrbileaceaeResumen
El nematodo agallador Meloidogyne incognita está reportado como el principal nematodo que causa daños severos en la agricultura alrededor del mundo. Los hongos nematófagos del género Arthrobotrys spp. son enemigos naturales de los nematodos, a los que pueden inmovilizar y digerir. Con la finalidad de disminuir el uso de nematicidas químicos, se pretende generar nuevas tecnologías a partir del uso de agentes para el control biológico de Meloidogyne incognita, como los hongos nematófagos del género Arthrobotrys spp. El objetivo del presente trabajo fue identificar especies del hongo del género Arthrobotrys, de diferentes regiones agrícolas de México, que tenga actividad nematófaga contra Meloidogyne incognita. Para obtener hongos y nematodos, durante 2014 se realizó la presente investigación a partir del uso de metodologías propias. Se procesaron 150 muestras de suelos agrícolas de una profundidad de 0 a 15 cm. Mediante técnicas de microscopía y claves taxonómicas se identificaron y encontraron cinco diferentes cepas de hongos nematófagos: Arthrobotrys musiformis (HN01), Drechslerella yunnanensis (HN02), Arthrobotrys oligospora (HN03), Artrobotrys spp. (HN04), Artrobotrys musiformis (HN05). Se realizaron bioensayos de actividad nematófaga, bajo condiciones in vitro, de cada especie identificada del género Arthobotrys contra Meloidogyne incognita. En una caja Petri de 5 cm de diámetro se depositaron hongos juveniles del segundo estadio de Meloidogyne incognita, a los que se les agregaron concentrados celulares 1x105 1x106 y 1x107 durante un periodo de 168 h. Se estableció un diseño completamente al azar, con arreglo factorial de 15 tratamientos con cinco repeticiones más un testigo adicional. Los datos obtenidos se estudiaron mediante un análisis probit, de los que se evaluó el porciento mortalidad con un análisis de varianza entre media de tratamientos y TL50. La capacidad nematófaga de cada hongo fue: HN01 94% TL50 106.07h; HN02 59% TL50 146.53h; HN03 87% TL50 118.24h; HN04 69% TL50 136.98h; HN05 72% TL50 131.88 h.
Descargas
Referencias
Barker, K. R., & Koenning, S. R. (1998). Developing sustainable systems for nematode management.Annua lReview of Phytopathology, 36, 165-205. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.phyto.36.1.165
Carpenter, J., Lynch, L., & Trout, T. (2001). Township limits on 1,3-D will impact adjustment to methyl bromide phase-out. California Agriculture, 55, 12-18. DOI: https://doi.org/10.3733/ca.v055n03p12
Chitwood, D. J. (2003). Research on plant-parasitic nematode biology conducted by the United States Department of Agriculture-Agricultural Research Service. Pest Management Science, 59, 748-753. DOI: https://doi.org/10.1002/ps.684
Dávila, L. (2005). Evaluación de la actividad biocontroladora de Arthrobotrys sp. y Paecilomyces sp. Sobre Meloidogyne javanica in vitro y bajo condiciones de invernadero en crisantemo (Drendranthema grandiflora Andernson). Agronomía colombiana.
Eilenberg, J., Hajek, A., & Lomer, C. (2001). Suggestions for unifying the terminology in biological control. BioControl, 46, 387-400. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1014193329979
Gams, W., & Zare, R. (2003). A taxonomic review of the clavicipitaceous anamorphs parasitizing nematodes and other microinvertebrates. In J. F. White Jr., C. W. Bacon, N. L. DOI: https://doi.org/10.1201/9780203912706.pt1
Gutiérrez, A. & Mendoza, P. (2013). Hongos nematófagos (Orbiliales) capturando, destruyendo y alimentándose de larvas hisotrópicas de Haemonchus contortus (Nematoda: Trichostrongylidae). Revista Mexicana de Micología.
Hugot, J. P., Baujard, P., & Morand, S. (2001). Biodiversity in helminths and nematodes as a field of study: Anoverview. Nematology, 3, 199-208. DOI: https://doi.org/10.1163/156854101750413270
Hywel-Jones & J. W. Spatafora (Eds.), Clavicipitalean fungi: Evolutionary biology, chemistry, and cultural impacts. New York: Marcel Dekker.
Jaffee, B., & Strong, D. (2005). Strong bottom-up and weak top-down effects in soil: Nematodeparasitized insects and nematode-trapping fungi. Soil Biology and Biochemistry, 37, 1011-1021. DOI: https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2004.05.026
Mitsui, Y. (1985). Distribution and ecology of nematode trapping fungi in Japan. JARQ, 18, 182-193.
Molinari, S. (2011). Natural genetic and induced plant resistance, as a control strategy to plantparasitic nematodes alternative to pesticides. Plant Cell Reports, 30, 311–323. DOI: https://doi.org/10.1007/s00299-010-0972-z
Nordbring-Hertz, B., Jansson, H. B., & Tunlid, A. (2006). Nematophagous fungi. In Encyclopedia of life sciences. Chichester: John Wiley & Sons. DOI: https://doi.org/10.1038/npg.els.0004293
Park, J., Gams, W., Scholler, M., Ghisalberti, E., & Sivasithamparam, K. (2002). Orbiliaceous nematode-trapping fungi and related species in Western Australia and their biological activities. Australasian Mycologist, 21, 45-52.
Persmark, L., & Jansson, H. B. (1997). Nematophagous fungi in the rhizosphere of agricultural crops. FEMS Microbiology Ecology, 22, 303-312. DOI: https://doi.org/10.1016/S0168-6496(97)00006-8
Sasser, J. N. (1980). Root-knot nematodes: A global menace to crop production. Plant Disease, 64, 36-41. DOI: https://doi.org/10.1094/PD-64-36
Tian, B. Y., Yang, J. K., & Zhang, K. Q. (2007). Bacteria used in the biological control of plantparasitic nematodes: Populations, mechanisms of action, and future prospects. FEMS Microbiology Ecology, 61, 197-213. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.2007.00349.x
Zhang, Y., Li, G. H., & Zhang, K. Q. (2011). A review on the research of nematophagous fungal species (In Chinese). Mycosystema, 30, 836-845.
Zopf, W. (1888). Zur Kenntnis der Infektionskrankheiten niederer Thiere und Pflanzen. Nova Acadamy of Caes.Leop. German. Nat. Cur, 52, 314-376.
Descargas
Publicado
Número
Sección
Licencia
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-CompartirIgual 4.0.
Cómo citar
PLUMX Metrics
